1、 血清必须贮存-20℃，如存放于4℃，请勿超过两周，对于某些单位一次无法用完一瓶，可在无菌条件下将其40-45分装于无菌50ml离心管中，由于血清解冻时体积会增加10％，必须预留此膨胀体积的空间，否则易发生污染或容器冻裂的情形。
 
2、 血清一般为200ml和400ml装量，因此我们建议您在使用中宜采取逐步解冻的方法解冻血清：-20℃→4℃冰箱或冷库溶解24小时→室温下全溶后再分装，一般以50 ml无菌离心管中分装40-45 ml。强烈建议您在使用过程中，必须规则地将血清摇晃均匀，小心勿造成气泡，使温度与成分均一，减少沉淀的发生。勿直接由-20℃放置至37℃环境下解冻，因为温度改变太大，溶易造成蛋白质凝结而产生沉淀。
 
3、 血清的灭活（heat-inactivation）一般是指56℃，30分钟水浴加热已完全解冻的血清，加热过程中必须规则地摇晃均匀。此处理的目的是使血清中的补体成分(complement)去活化。但是，经过灭活处理的血清会因而造成沉淀的显著增多，且会影响血清的品质。所以，细胞培养用牛血清不做灭活处理。而诊断试剂用血清在除菌过滤前进行过灭活处理。
 
4、 在使用血清的时候，勿将血清留置于37℃太久，血清会变得混浊，同时血清中许多较不稳定的成分会因而受到破坏，影响血清的品质。
 
5、 高融合细胞培养用小牛血清和标准型细胞培养用小牛血清均需采用100纳米滤器连续三次去除支原体的无菌过滤。若在血清产品中发现悬浮物，除非必须去除，建议将血清加入培养基内一起过滤，勿直接过滤血清。
 
6、 血清的沉淀物
 6．1 凝絮物：其产生的原因有多种，但普遍的原因是血清中的脂蛋白（lipoprotein）变形及解冻后血清中存在的纤维蛋白（fibrin）造成，这些凝絮沉淀物不会影响血清本身的品质。除非必须减少这些沉淀物，可用离心3000rpm,5min去除，或离心后取上清液加入培养基中一起除菌过滤。
 
2 显微镜下观察“小黑点”，通常经过热处理的血清，沉淀物的形成会显著增多。有些沉淀物在显微镜下观察像是“小黑点”，常会误认为是血清遭受污染，而将血清放置在37℃中欲培养此“微生物”，但37℃环境下，又会使此沉淀物增多，更会误认为微生物的增殖，但以培养细菌的培养基检测，又没有污染。一般而言，此小黑点不会影响细胞的生长。